Cyanin-3-maleimid
| Artikel-Nr. | Packungseinheit | Preis | Vorlaufzeit | Jetzt kaufen |
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| 11080 | 1 mg | $110.00 | Auf Lager | |
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| 51080 | 50 mg |
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| 61080 | 100 mg |
$1190.00
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Thiol-reaktiver Cyanin-3-Farbstoff, ein Analogon zu Cy3®-maleimid. Dieses Reagenz kann verwendet werden, um Cyanin-3-Fluorophore an Proteine und Peptide, die Cysteinreste enthalten, sowie an andere thiolhaltige Moleküle (wie zum Beispiel thiolhaltige Oligonukleotide) zu binden.
Cystine müssen vor der Markierung mit TCEP (Tris-Carboxyethylphosphin) reduziert werden.
Die Markierung mit Cyanin-3-maleimid ist selektiv und effizient.
Für die Markierung von Antikörpern und anderen sensiblen Proteinen empfehlen wir den Einsatz des wasserlöslichen Sulfo-Cyanin-3-maleimids.
Absorptions- und Emissionsspektren von Cyanin 3
Empfohlenes Protokoll
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DMF (Dimethylformamid), Markierungsgüte
Lösungsmittel für Markierungsreaktionen mit NHS-EsternBDP-R6G-maleimid
BDP R6G ist ein Bordipyrromethen-Fluorophor, der auf Filtersätze für Rhodamin 6G (R6G) abgestimmt ist. Es handelt sich hier um ein thiolreaktives Maleimid insbesondere für die Markierung von Cysteinresten in Proteinen.Sulfo-Cyanin 3 NHS-Ester
Wasserlöslicher aktivierter Ester von Cyanin 3 für die Markierung von Amino-BiomolekülenAllgemeine Eigenschaften
| Erscheinungsform: | rotes Pulver |
| Molekülmasse: | 615.20 |
| Molekülformel: | C36H43ClN4O3 |
| Löslichkeit: | löslich in organischen Lösungsmitteln (DMF, DMSO, Dichlormethan), nicht löslich in Wasser |
| Qualitätskontrolle: | NMR 1H, HPLC-MS (95 %) |
| Lagerungsbedingungen: | Lagerbeständigkeit: 24 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C an einem lichtgeschützten Ort. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern. |
| Sicherheitsdatenblatt:: | herunterladen |
| Product specifications |
Spektrale Eigenschaften
| Anregungsmaximum / nm: | 555 |
|
ε |
150000 |
| Emissionsmaximum / nm: | 570 |
| Fluoreszenz-Quantenausbeute: | 0.31 |
| CF260: | 0.04 |
| CF280: | 0.09 |
Zitierungen
- Singh, R.K.; Fan, J.; Gioacchini, N.; Watanabe, S.; Bilsel, O.; Peterson, C.L. Transient Kinetic Analysis of SWR1C-Catalyzed H2A.Z Deposition Unravels the Impact of Nucleosome Dynamics and the Asymmetry of Histone Exchange. Cell Reports, 2019, 27, 374–386.e4. doi: 10.1016/j.celrep.2019.03.035
- Gagni, P.; Romanato, A.; Bergamaschi, G.; Bettotti, P.; Vanna, R.; Piotto, C.; Morasso, C.F.; Chiari, M.; Cretich, M.; Gori, A. A self-assembling peptide hydrogel for ultrarapid 3D bioassays. Nanoscale Advances, 2019, 1(2), 490–497. doi: 10.1039/c8na00158h
- Wu, B.; Zhang, H.; Sun, R.; Peng, S.; Cooperman, B.S.; Goldman, Y.E.; Chen, C. Translocation kinetics and structural dynamics of ribosomes are modulated by the conformational plasticity of downstream pseudoknots. Nucleic Acids Research, 2018, 46(18), 9736–9748. doi: 10.1093/nar/gky636
- Liu, G.W.; Prossnitz, A.N.; Eng, D.G.; Cheng, Y.; Subrahmanyam, N.; Pippin, J.W.; Lamm, R.J.; Ngambenjawong, C.; Ghandehari, H.; Shankland, S.J.; Pun, S.H. Glomerular disease augments kidney accumulation of synthetic anionic polymers. Biomaterials, 2018, 178, 317–325. doi: 10.1016/j.biomaterials.2018.06.001
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