Sulfo-Cyanin-3-maleimid

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Sulfo-Cyanin-3-maleimid ist ein wasserlöslicher, Thiol-reaktiver Fluoreszenzfarbstoff für die Markierung von Biomolekülen. Es handelt sich um ein Analogon zu Cy3®-maleimid.

Dieses Reagenz empfiehlt sich für die Markierung von Antikörpern und anderen labilen Proteinen unter milden, rein wässrigen Bedingungen. Der Fluorophor ist wasserlöslich und kommt ohne den Einsatz organischer Hilfslösungsmittel aus.

Ein nicht-sulfoniertes Cyanin-3-maleimid ist ebenfalls erhältlich.

Sulfo-Cyanin-3-maleimid

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Allgemeine Eigenschaften

Erscheinungsform: rotes Pulver
Molekülmasse: 776.96
CAS-Nummer: 1656990-68-9
Molekülformel: C36H41KN4O9S2
IUPAC-Name: 3H-​Indolium, 2-​[3-​[1-​[6-​[[2-​(2,​5-​dihydro-​2,​5-​dioxo-​1H-​pyrrol-​1-​yl)​ethyl]​amino]​-​6-​oxohexyl]​-​1,​3-​dihydro-​3,​3-​dimethyl-​5-​sulfo-​2H-​indol-​2-​ylidene]​-​1-​propen-​1-​yl]​-​1,​3,​3-​trimethyl-​5-​sulfo-​, inner salt, potassium salt
Löslichkeit: gut löslich in Wasser, DMF, DMSO
Qualitätskontrolle: NMR 1H, HPLC-MS (95+ %)
Lagerungsbedingungen: Lagerung: 24 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C im Dunkeln. Transport: bei Raumtemperatur für bis zu 3 Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern.
Sicherheitsdatenblatt:: herunterladen
Product specifications

Spektrale Eigenschaften

Anregungs-/Absorptionsmaximum / nm: 548
ε / L⋅mol−1⋅cm−1: 162000
Emissionsmaximum / nm: 563
Fluoreszenz-Quantenausbeute: 0.1
CF260: 0.03
CF280: 0.06

Zitierungen

  1. Ast, J.; Novak, A.N.; Podewin, T.; Fine, N.H.F.; Jones, B.; Tomas, A.; Birke, R.; Roßmann, K.; Mathes, B:; Eichhorst, J.; Lehmann, M.; Linnemann, A.K.; Hodson, D.J.; Broichhagen, J. An expanded LUXendin color palette for GLP1R detection and visualization in vitro and in vivo. ChemRxiv, preprint. doi: 10.33774/chemrxiv-2021-7rngq
  2. Mohale, M.; Gundampati, R.K.; Thallapuranam, S.; Heyes, C.D. Site-specific labeling and functional efficiencies of human fibroblast growth Factor-1 with a range of fluorescent dyes in the flexible N-Terminal region and a rigid β-turn region. Analytical Biochemistry, 2022, 640, 114524. doi: 10.1016/j.ab.2021.114524
  3. Bauer, B.W.; Davidson, I.F.; Canena, D.; Wutz, G.; Tang, W.; Litos, G.; Horn, S.; Hinterdorfer, P.; Peters, J.-M. Cohesin mediates DNA loop extrusion by a “swing and clamp” mechanism. Cell, 2021, 184(21), 5448--5464.e22. doi: 10.1016/j.cell.2021.09.016
  4. Deckard, C.E.; Sczepanski, J.T. Reversible chromatin condensation by the DNA repair and demethylation factor thymine DNA glycosylase. Nucleic Acids Research, 2021, 49(5), 2450–2459. doi: 10.1093/nar/gkab040
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