Sulfo-Cyanin3-Maleimid

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Sulfo-Cyanin3-Maleimid ist ein wasserlöslicher, Thiol-reaktiver Fluoreszenzfarbstoff für die Markierung von Biomolekülen. Es handelt sich um ein Analogon zu Cy3®-maleimid.

Dieses Reagenz empfiehlt sich für die Markierung von Antikörpern und anderen labilen Proteinen unter milden, rein wässrigen Bedingungen. Der Fluorophor ist wasserlöslich und kommt ohne den Einsatz organischer Hilfslösungsmittel aus.

Ein nicht-sulfoniertes Cyanin3-Maleimid ist ebenfalls erhältlich.

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Cyanin7-Maleimid ist ein sulfhydryl-reaktiver NIR-Farbstoff.

Allgemeine Eigenschaften

Erscheinungsform: rotes Pulver
Molekülmasse: 776.96
CAS-Nummer: 1656990-68-9
Molekülformel: C36H41KN4O9S2
IUPAC-Name: 3H-​Indolium, 2-​[3-​[1-​[6-​[[2-​(2,​5-​dihydro-​2,​5-​dioxo-​1H-​pyrrol-​1-​yl)​ethyl]​amino]​-​6-​oxohexyl]​-​1,​3-​dihydro-​3,​3-​dimethyl-​5-​sulfo-​2H-​indol-​2-​ylidene]​-​1-​propen-​1-​yl]​-​1,​3,​3-​trimethyl-​5-​sulfo-​, inner salt, potassium salt
Löslichkeit: gut löslich in Wasser, DMF, DMSO
Qualitätskontrolle: NMR 1H, HPLC-MS (95+ %)
Lagerungsbedingungen: Lagerung: 24 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C im Dunkeln. Transport: bei Raumtemperatur für bis zu 3 Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern.
Sicherheitsdatenblatt: herunterladen
Product specifications

Spektrale Eigenschaften

Anregungs-/Absorptionsmaximum / nm: 548
ε / L⋅mol−1⋅cm−1: 162000
Emissionsmaximum / nm: 563
Fluoreszenz-Quantenausbeute: 0.1
CF260: 0.03
CF280: 0.06

Zitierungen

  1. Damm, A.; Paik, S.-J.; Sadhu, R.K.; Di-Cicco, A.; Manzi, J.; Castellana, M.; Margeat, E.; Dahan, M.; Sens, P.; Lévy, D.; Bassereau, P. Mechanosensitivity of an ABC Membrane Transporter Revealed by Single Molecule FRET and Activity Measurement. bioRxiv, 2024, preprint. doi: 10.1101/2024.01.24.577054
  2. Proksch, J.; Dal Colle, M. C. S.; Heinz, F.; Schmidt, R. F.; Gottwald, J.; Delbianco, M.; Keller, B. G.; Gradzielski, M.; Alexiev, U.; Koksch, B. Impact of Glycan Nature on Structure and Viscoelastic Properties of Glycopeptide Hydrogels. Journal of Peptide Science, 2024, 30(8), e3599. doi: 10.1002/psc.3599
  3. Moochickal Assainar, B.; Ragunathan, K.; Baldridge, R.D. Direct observation of autoubiquitination for an integral membrane ubiquitin ligase in ERAD. Nature Communications, 2024, 15, 1340. doi: 10.1038/s41467-024-45541-3
  4. Williams, C.; Dong, K. C.; Arkinson, C.; Martin, A. The Ufd1 Cofactor Determines the Linkage Specificity of Polyubiquitin Chain Engagement by the AAA+ ATPase Cdc48. Molecular Cell, 2023, 83(5), 759-769.e7. doi: 10.1016/j.molcel.2023.01.016
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