Cyanin 5.5 NHS-Ester

Cyanin 5.5 NHS-Ester Mikroskopie Proteinmarkierung
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Cyanin 5.5 NHS-Ester (ein Analogon zu Cy5.5® NHS-Ester) ist ein Reaktivfarbstoff für die Markierung von Aminogruppen in Peptiden, Proteinen und Oligonukleotiden.

Cyanin 5.5 ist ein im Fernrot- und Nahinfrarotbereich emittierender Farbstoff, der in idealer Weise für Fluoreszenzmessungen geeignet ist, wenn starke Hintergrundfluoreszenz die Messung beeinträchtigt. Er ist ebenfalls geeignet für NIR-Bildgebungsverfahren im lebenden Organismus.

Dieses Reagenz kann als Ersatz für die NHS-Ester von Cy5.5®, Alexa Fluor® 680 und DyLight 680 verwendet werden.

Cyanin 5.5 NHS-Ester
Cyanin 5.5 NHS-Ester
Struktur des Cyanin 5.5 NHS-Esters
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Struktur des Cyanin 5.5 NHS-Esters

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Allgemeine Eigenschaften

Erscheinungsform: dunkelblaues Pulver
Molekülmasse: 767.66
CAS-Nummer: 1469277-96-0, 2054318-82-8 (chloride); 1469541-53-4, 1874250-60-8 (without anion)
Molekülformel: C44H46N3BF4O4
IUPAC-Name: 1H-​Benz[e]​indolium, 2-​[5-​(1,​3-​dihydro-​1,​1,​3-​trimethyl-​2H-​benz[e]​indol-​2-​ylidene)​-​1,​3-​pentadien-​1-​yl]​-​3-​[6-​[(2,​5-​dioxo-​1-​pyrrolidinyl)​oxy]​-​6-​oxohexyl]​-​1,​1-​dimethyl-
Löslichkeit: löslich in organischen Lösungsmitteln (DMSO, DMF, Dichlormethan), geringe Löslichkeit in Wasser
Qualitätskontrolle: NMR 1H, HPLC-MS (95 %)
Lagerungsbedingungen: Lagerbeständigkeit: 12 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C an einem lichtgeschützten Ort. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern.
Sicherheitsdatenblatt:: herunterladen
Product specifications

Spektrale Eigenschaften

Anregungsmaximum / nm: 684
ε / L⋅mol−1⋅cm−1: 198000
Emissionsmaximum / nm: 710
Fluoreszenz-Quantenausbeute: 0.2
CF260: 0.07
CF280: 0.03

Zitierungen

  1. Beldman, T.J.; Malinova, T.S.; Desclos, E.; Grootemaat, A.E.; Misiak, A.L.S.; van der Velden, S.; van Roomen, C.P.A.A.; Beckers, L.; van Veen, H.A.; Krawczyk, P.M.; Hoebe, R.A.; Sluimer, J.C.; Neele, A.E.; de Winther, M.P.J.; van der Wel, N.N.; Lutgens, E.; Mulder, W.J.M.; Huveneers, S.; Kluza, E. Nanoparticle-Aided Characterization of Arterial Endothelial Architecture during Atherosclerosis Progression and Metabolic Therapy. ACS Nano, in press. doi: 10.1021/acsnano.8b08875
  2. Nguyen, H.T.; Byeon, J.H.; Phung, C.D.; Pham, L.M.; Ku, S.K.; Yong, C.S.; Kim, J.O. Method for the Instant In-Flight Manufacture of Black Phosphorus to Assemble [email protected] Nanocomposites for Targeted Photoimmunotherapy. ACS Applied Materials & Interfaces, 2019, 11(28), 24959–24970. doi: 10.1021/acsami.9b04632
  3. Andersen, V.L.; Vinther, M.; Kumar, R.; Ries, A.; Wengel, J.; Nielsen, J.S.; Kjems, J. A self-assembled, modular nucleic acid-based nanoscaffold for multivalent theranostic medicine. Theranostics, 2019, 9(9), 2662–2677. doi: 10.7150/thno.32060
  4. Ha, S.-W.; Hwang, K.; Jin, J.; Cho, A.-S.; Kim, T.Y.; Hwang, S.I.; Lee, H.J.; Kim, C.-Y. Ultrasound-sensitizing nanoparticle complex for overcoming the blood-brain barrier: an effective drug delivery system. International Journal of Nanomedicine, 2019, 14, 3743–3752. doi: 10.2147/ijn.s193258
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