Cyanin-5-maleimid

Cyanin 5 Maleimide Mikroskopie
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Cyanin-5-maleimid ist ein reaktiver Fluoreszenzfarbstoff, der selektiv an Thiolgruppen von Biomolekülen bindet (z. B. an Cysteinreste in Peptiden und Proteinen).

Es handelt sich um ein Analogon zu Cy5®-maleimid, einem sehr gebräuchlichen Fluorophor, der mit vielen Detektionsgeräten, wie beispielsweise Mikroskopen, Imagern und Fluoreszenz-Lesegeräten, kompatibel ist.

Für die Markierung von Antikörpern und anderen sensiblen Proteinen empfehlen wir den Einsatz des wasserlöslichen Sulfo-Cyanin-5-maleimids.

Cyanin-5-maleimid
Cyanin-5-maleimid
Cyanin-5-maleimid
Struktur von Cyanin-5-maleimid
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Absorptions- und Emissionsspektren von Cyanin 5

Absorptions- und Emissionsspektren von Cyanin 5

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Allgemeine Eigenschaften

Erscheinungsform: dunkelblaues Pulver
Molekülmasse: 641.24
CAS-Nummer: 1437872-46-2 (without anion), 1437796-65-0 (chloride)
Molekülformel: C38H45ClN4O3
IUPAC-Name: 3H-​Indolium, 2-​[5-​[1-​[6-​[[2-​(2,​5-​dihydro-​2,​5-​dioxo-​1H-​pyrrol-​1-​yl)​ethyl]​amino]​-​6-​oxohexyl]​-​1,​3-​dihydro-​3,​3-​dimethyl-​2H-​indol-​2-​ylidene]​-​1,​3-​pentadien-​1-​yl]​-​1,​3,​3-​trimethyl-
Löslichkeit: löslich in organischen Lösungsmitteln (DMF, DMSO, Dichlormethan), nicht löslich in Wasser
Qualitätskontrolle: NMR 1H, HPLC-MS (95 %)
Lagerungsbedingungen: Lagerbeständigkeit: 24 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C an einem lichtgeschützten Ort. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern.
Sicherheitsdatenblatt:: herunterladen
Product specifications

Spektrale Eigenschaften

Anregungsmaximum / nm: 646
ε / L⋅mol−1⋅cm−1: 250000
Emissionsmaximum / nm: 662
Fluoreszenz-Quantenausbeute: 0.2
CF260: 0.03
CF280: 0.04

Zitierungen

  1. Kesarwani, V.; Kelly, H.G.; Shankar, M.; Robinson, K.J.; Kent, S.J.; Traven, A.; Corrie, S.R. Characterisation of key bio-nano interactions between organosilica nanoparticles and Candida albicans. ACS Applied Materials & Interfaces, in press. doi: 10.1021/acsami.9b10853
  2. Ast, J.; Arvaniti, A.; Fine, N.H.F.; Nasteska, D.; Ashford, F.B.; Stamataki, Z.M Koszegi, Z.; Bacon, A.; Trapp, S.; Jones, B.J.; Hastoy, B.; Tomas, A.; Reissaus, C.; Linnemann, A.K.; D'Este, E.; Calebiro, D.; Johnsson, K.; Podewin, T.; Broichhagen, J.; Hodson, D.J. LUXendins reveal endogenous glucagon-like peptide-1 receptor distribution and dynamics. bioRxiv, preprint. doi: 10.1101/557132
  3. Gardinier, T.C.; Turker, M.Z.; Hinckley, J.A.; Katt, W.P.; DomNwachukwu, N.; Woodruff, F.; Hersh, J.; Wang, J.; Cerione, R.A.; Wiesner, U.B. Controlling Surface Chemical Heterogeneities of Ultrasmall Fluorescent Core–Shell Silica Nanoparticles as Revealed by High-Performance Liquid Chromatography. The Journal of Physical Chemistry C, 2019, 123(37), 23246–23254. doi: 10.1021/acs.jpcc.9b06905
  4. Turker, M.Z.; Gardinier, T.C.; Hinckley, J.A.; Contreras, C.B.; Woodruff, F.; Ma, K.; Kohle, F.F.E.; Wiesner, U.B. Inner and Outer Surface Functionalizations of Ultrasmall Fluorescent Silica Nanorings As Shown by High-Performance Liquid Chromatography. Chemistry of Materials, 2019, 31(15), 5519–5528. doi: 10.1021/acs.chemmater.9b01236
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