Rechner für die Proteinmarkierung (NHS-Ester-Markierung)

1. MW des Zielproteins: Da

Molekülmasse des zu markierenden Proteins (z. B. für IgG-Antikörper MW = 150000)

Das Molekulargewicht des Proteins sollte eine Zahl größer oder gleich 100 sein.

2. Wählen Sie das Markermolekül:
oder geben Sie die Molekülmasse ein: Da

Die Masse des Markermoleküls finden Sie auch auf der jeweiligen Produktseite.

Die Molekülmasse des Markermoleküls muss eine Zahl sein, die größer oder gleich 100 ist.

3. Molarer Überschuss des Markermoleküls:

Molarer Überschuss des Markermoleküls in der Reaktion. Je mehr vom Markermolekül eingesetzt wird, desto höher fällt das Verhältnis von Marker zu Protein im Konjugat aus. Die tatsächliche Abhängigkeit variiert je nach Markermolekül und Protein. Üblicherweise erzielt man mit einem 8-fachen Überschuss ein Marker-zu-Protein-Verhältnis von 1–3.

Molarer Überschuss des Markermoleküls sollte eine Zahl zwischen 0,1 und 50000 sein.

4. Mein Protein liegt vor

Wählen Sie aus, ob das Protein als Feststoff oder in Lösung vorliegt.

5. Proteinmasse: mg

Die Proteingröße sollte eine Zahl sein, die größer oder gleich 0,01 ist.

Zusätzliche Optionen

Anteil eines Hilfslösungsmittels (DMF/DMSO) in der Reaktion: %

Ein organisches Hilfslösungsmittel sollte zugesetzt werden, wenn ein hydrophobes Markermolekül eingesetzt wird. Auch sollten NHS-Ester und Maleimide nicht in wässriger Lösung gelagert werden. Manche sehr empfindliche Proteine tolerieren keine Hilfslösungsmittel, aber viele sind mit moderaten DMSO-Konzentrationen gut kompatibel. Bis zu 10 % können mit den meisten Protein eingesetzt werden.

Finale Proteinkonzentration in der Reaktion: mg/mL

Ein guter Ausgangswert beträgt 10 mg/ml. Höhere Konzentrationen führen zu effizienterer Nutzung des Markers, allerdings sind nicht alle Proteine gut genug löslich, um hohe Konzentrationen zu erreichen.