Cyanin-3-hydrazid

Cyanin 3 Hydrazide Mikroskopie
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Cyanin-3-hydrazid ist ein Fluoreszenzfarbstoff zur Kopplung an Carbonylgruppen, ein Analogon zu Cy3®-hydrazid.

Dieses Reagenz ermöglicht die Markierung verschiedener Biomoleküle mit Carbonylgruppen: Antikörper und andere Glykoproteine nach Oxidation mit Periodat, Proteine, die oxidativem Stress ausgesetzt waren oder deaminiert sind, sowie reduzierende Zucker. Der Fluorophor Cyanin 3 ist mit vielen Detektionsgeräten kompatibel.

Struktur von Cyanin-3-hydrazid
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Absorptions- und Emissionsspektren von Cyanin 3

Absorptions- und Emissionsspektren von Cyanin 3

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6-FAM hydrazide is a carbonyl reactive fluorescein (FAM) derivative. This product contains a pure 6-isomer of fluorescein.

Allgemeine Eigenschaften

Erscheinungsform: rotes Pulver
Molekülmasse: 543.57
Molekülformel: C30H40Cl2N4O
Löslichkeit: mäßig löslich in Wasser, gut löslich in polaren organischen Lösungsmitteln (DMF, DMSO, Alkohole)
Qualitätskontrolle: NMR 1H and HPLC-MS (95 %)
Lagerungsbedingungen: Lagerung: 24 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C im Dunkeln. Transport: bei Raumtemperatur für bis zu 3 Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern.
Sicherheitsdatenblatt:: herunterladen
Product specifications

Spektrale Eigenschaften

Anregungsmaximum / nm: 555
ε / L⋅mol−1⋅cm−1: 150000
Emissionsmaximum / nm: 570
Fluoreszenz-Quantenausbeute: 0.31
CF260: 0.04
CF280: 0.09

Zitierungen

  1. Zhang, J.; Chetnani, B.; Cormack, E.D.; Alonso, D.; Liu, W.; Mondragon, A.; Fei, J. Specific structural elements of the T-box riboswitch drive the two-step binding of the tRNA ligand. eLife, 2018, 7, e39518. doi: 10.7554/eLife.39518
  2. Cui, Z.; Wu, Y.; Mureev, S.; Alexandrov, K. Oligonucleotide-mediated tRNA sequestration enables one-pot sense codon reassignment in vitro. Nucleic Acids Research, 2018, 46(12), 6387–6400. doi: 10.1093/nar/gky365
  3. Porciani, D.; Cardwell, L.N.; Tawiah, K.d.; Alam, K.K.; Lange, M.J.; Daniels, M.A.; Burke, D.H. Modular cell-internalizing aptamer nanostructure enables targeted delivery of large functional RNAs in cancer cell lines. Nature Communications, 2018, 9(1), 2283. doi: 10.1038/s41467-018-04691-x
  4. Poudyal, R.R.; Nguyen, P.D.M.; Lokugamage, M.P.; Callaway, M.K.; Gavette, J.V.; Krishnamurthy, R.; Burke, D.H. Nucleobase modification by an RNA enzyme. Nucleic Acids Research, 2017, 45(3), 1345–1354. doi: 10.1093/nar/gkw1199
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