Sulfo-Cyanin3-Maleimid
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Sulfo-Cyanin3-Maleimid ist ein wasserlöslicher, Thiol-reaktiver Fluoreszenzfarbstoff für die Markierung von Biomolekülen. Es handelt sich um ein Analogon zu Cy3®-maleimid.
Dieses Reagenz empfiehlt sich für die Markierung von Antikörpern und anderen labilen Proteinen unter milden, rein wässrigen Bedingungen. Der Fluorophor ist wasserlöslich und kommt ohne den Einsatz organischer Hilfslösungsmittel aus.
Ein nicht-sulfoniertes Cyanin3-Maleimid ist ebenfalls erhältlich.
Sulfo-Cyanin-3-maleimid

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Sulfo-Cyanin5.5 NHS-Ester
Wasserlösliche, sulfonierte Form des fernroten Fluorophors Cyanin5.5 als NHS-Ester für die Bindung an AminogruppenFAM-Amin, 6-Isomer
Aminderivat des Fluorophors Fluorescein (reines 6-Isomer) für die Markierung mittels enzymatischer Transaminierung, reduzierender Aminierung oder Reaktion mit elektrophilen Verbindungen.Sulfo-Cyanin3-Amin
Wasserlöslicher Cyaninfarbstoff mit heller Fluoreszenz und hohem Extinktionskoeffizienten. Das Molekül trägt eine Aminogruppe für die Konjugation mit Elektrophilen und für enzymatische Markierungsreaktionen mittels Transaminierung.Allgemeine Eigenschaften
Erscheinungsform: | rotes Pulver |
Molekülmasse: | 776.96 |
CAS-Nummer: | 1656990-68-9 |
Molekülformel: | C36H41KN4O9S2 |
IUPAC-Name: | 3H-Indolium, 2-[3-[1-[6-[[2-(2,5-dihydro-2,5-dioxo-1H-pyrrol-1-yl)ethyl]amino]-6-oxohexyl]-1,3-dihydro-3,3-dimethyl-5-sulfo-2H-indol-2-ylidene]-1-propen-1-yl]-1,3,3-trimethyl-5-sulfo-, inner salt, potassium salt |
Löslichkeit: | gut löslich in Wasser, DMF, DMSO |
Qualitätskontrolle: | NMR 1H, HPLC-MS (95+ %) |
Lagerungsbedingungen: | Lagerung: 24 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C im Dunkeln. Transport: bei Raumtemperatur für bis zu 3 Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern. |
Sicherheitsdatenblatt: | herunterladen |
Product specifications |
Spektrale Eigenschaften
Anregungs-/Absorptionsmaximum / nm: | 548 |
ε |
162000 |
Emissionsmaximum / nm: | 563 |
Fluoreszenz-Quantenausbeute: | 0.1 |
CF260: | 0.03 |
CF280: | 0.06 |
Zitierungen
- Damm, A.; Paik, S.-J.; Sadhu, R.K.; Di-Cicco, A.; Manzi, J.; Castellana, M.; Margeat, E.; Dahan, M.; Sens, P.; Lévy, D.; Bassereau, P. Mechanosensitivity of an ABC Membrane Transporter Revealed by Single Molecule FRET and Activity Measurement. bioRxiv, 2024, preprint. doi: 10.1101/2024.01.24.577054
- Proksch, J.; Dal Colle, M. C. S.; Heinz, F.; Schmidt, R. F.; Gottwald, J.; Delbianco, M.; Keller, B. G.; Gradzielski, M.; Alexiev, U.; Koksch, B. Impact of Glycan Nature on Structure and Viscoelastic Properties of Glycopeptide Hydrogels. Journal of Peptide Science, 2024, 30(8), e3599. doi: 10.1002/psc.3599
- Moochickal Assainar, B.; Ragunathan, K.; Baldridge, R.D. Direct observation of autoubiquitination for an integral membrane ubiquitin ligase in ERAD. Nature Communications, 2024, 15, 1340. doi: 10.1038/s41467-024-45541-3
- Williams, C.; Dong, K. C.; Arkinson, C.; Martin, A. The Ufd1 Cofactor Determines the Linkage Specificity of Polyubiquitin Chain Engagement by the AAA+ ATPase Cdc48. Molecular Cell, 2023, 83(5), 759-769.e7. doi: 10.1016/j.molcel.2023.01.016
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