Sulfo-Cyanin-3-azid
| Artikel-Nr. | Packungseinheit | Preis | Vorlaufzeit | Jetzt kaufen |
|---|---|---|---|---|
| A1330 | 1 mg | $110.00 | Auf Lager | |
| B1330 | 5 mg | $290.00 | Auf Lager | |
| C1330 | 10 mg |
$470.00
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| D1330 | 25 mg |
$690.00
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| E1330 | 50 mg |
$1270.00
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| F1330 | 100 mg |
$1990.00
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Sulfo-Cyanin-3-azid ist ein wasserlösliches Farbstoffazid für die Click-Chemie. Die Absorptions- und Emissionspektren sind mit denen des Fluorophors Cy3® identisch.
Die Helligkeit und Fotostabilität des Fluorophors zusammen mit der guten Wasserlöslichkeit machen dieses Reagenz zur idealen Wahl für die Click-Chemie-Markierung verschiedener Moleküle in wässriger Phase.
Die Click-Reaktion kann in rein wässriger Phase und ohne Zusatz organischer Hilfslösungsmittel durchgeführt werden. Das Reagenz ist insbesondere bestimmt für die Markierung von empfindlichen Molekülen, wie zum Beispiel Proteinen bis hin zu ganzen biologischen Objekten.
Absorptions- und Emissionsspektren von Sulfo-Cyanin 3
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Aminreaktiver BDP FL, ein heller und photostabiler Fluorophor für FAM-Kanäle.Allgemeine Eigenschaften
| Erscheinungsform: | dunkelrote Kristalle |
| Molekülmasse: | 736.94 |
| CAS-Nummer: | 2055138-89-9 (sodium salt), 1658416-54-6 |
| Molekülformel: | C33H41N6KO7S2 |
| Löslichkeit: | sehr gut löslich in Wasser |
| Qualitätskontrolle: | NMR 1H, HPLC-MS (95%) |
| Lagerungsbedingungen: | Lagerbeständigkeit: 24 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C an einem lichtgeschützten Ort. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. |
| Sicherheitsdatenblatt:: | herunterladen |
| Product specifications |
Spektrale Eigenschaften
| Anregungsmaximum / nm: | 548 |
|
ε |
162000 |
| Emissionsmaximum / nm: | 563 |
| Fluoreszenz-Quantenausbeute: | 0.1 |
| CF260: | 0.03 |
| CF280: | 0.06 |
Zitierungen
- Wells, C.I.; Al-Ali, H.; Andrews, D.M.; Asquith, C.R.M.; Axtman, A.D.; Chung, M.; Dikic, I.; Ebner, D.; Elkins, J.M.; Ettmayer, P.; Fischer, C.; Frederiksen, M.; Gray, N.S.; Hatch, S.; Knapp, S.; Lee, S.; Lücking, U.; Michaelides, M.; Mills, C.E.; Müller, S.; Owen, D.; Picado, A.; Ramadan, K.; Saikatendu, K.S.; Schröder, M.; Stolz, A.; Tellechea, M.; Treiber, D.K.; Turunen, B.J.; Vilar, S.; Wang, J.; Zuercher, W.J.; Willson, T.M.; Drewry, D.H. The Kinase Chemogenomic Set (KCGS): An open science resource for kinase vulnerability identification. bioRxiv, preprint. doi: 10.1101/2019.12.22.886523
- Syga, L.; De Vries, R.H.; van Oosterhout, H.; Bartelds, R.; Boersma, A.J.; Roelfes, G.; Poolman, B. A trifunctional linker for palmitoylation and peptide and protein localization in biological membranes. ChemBioChem, in press. doi: 10.1002/cbic.201900655
- Li, Z.; Pinch, B.J.; Olson, C.M.; Donovan, K.A.; Nowak, R.P.; Mills, C.E.; Scott, D.A.; Doctor, Z.M.; Eleuteri, N.A.; Chung, M.; Sorger, P.K.; Fischer, E.S.; Gray, N.S. Development and Characterization of a Wee1 Kinase Degrader. Cell Chemical Biology, 2020, 27(1), 57–65.e9. doi: 10.1016/j.chembiol.2019.10.013
- Ereskovsky, A.V.; Tokina, D.B.; Saidov, D.M.; Baghdiguian, S.; Le Goff, E.; Lavrov, A.I. Transdifferentiation and mesenchymal-to-epithelial transition during regeneration in Demospongiae (Porifera). Journal of Experimental Zoology. Part B, 2020, 334(1), 37–58. doi: 10.1002/jez.b.22919
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