Sulfo-Cyanin 7 NHS-Ester

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Aminreaktiver Succinimidylester des wasserlöslichen Nahinfrarot-Farbstoffs Cyanin 7

Sulfo-Cyanin 7 ist ein fortschrittliches Analogon des Fluorophors Cy7® mit einer um 20 % höheren Quantenausbeute und besserer Photostabilität. Dieser Farbstoff ist insbesondere für die NIR-Bildgebung geeignet.

Die Nahinfrarot-Fluoreszenz-Bildgebung nutzt die Transparenz von biologischen Geweben in einem bestimmten Wellenlängenbereich. Die Detektionsmethode ist zerstörungsfrei und ermöglicht die Überwachung der Verteilung von markierten Molekülen in lebenden Organismen.

Das Reagenz Sulfo-Cyanin 7 NHS-Ester ermöglicht die unkomplizierte Markierung von Biomolekülen wie zum Beispiel Proteinen. Farbstoffmarkierte Moleküle können anschließend in in vivo-Forschungsarbeiten sowie für Versuche in der Arzneimittelentwicklung eingesetzt werden.

Dieses Reagenz ist gut wasserlöslich und insbesondere geeignet für die Markierung von empfindlichen Proteinen sowie von Proteinen, die anfällig für Denaturierung sind. Ein nicht sulfonierter Cyanin 7 NHS-Ester, der in organischer Phase löslich ist, ist ebenfalls erhältlich.

Absorptions- und Emissionsspektren des Fluorophors Sulfo-Cyanin 7

Absorptions- und Emissionsspektren des Fluorophors Sulfo-Cyanin 7

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Allgemeine Eigenschaften

Erscheinungsform: dunkelgrünes Pulver
Molekülmasse: 844.05
CAS-Nummer: 1603861-95-5 (potassium salt); 1604244-45-2 (inner salt)
Molekülformel: C41H46N3KO10S2
Löslichkeit: gut löslich in Wasser, DMF, DMSO
Qualitätskontrolle: NMR 1H, HPLC-MS (95%)
Lagerungsbedingungen: Lagerbeständigkeit: 12 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C an einem lichtgeschützten Ort. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern.
Sicherheitsdatenblatt:: herunterladen
Product specifications

Spektrale Eigenschaften

Anregungsmaximum / nm: 750
ε / L⋅mol−1⋅cm−1: 240600
Emissionsmaximum / nm: 773
CF260: 0.04
CF280: 0.04

Zitierungen

  1. Anani, T.; Brannen, A.; Panizzi, P.; Duin, E.C.; David, A.E. Quantitative, real-time in vivo tracking of magnetic nanoparticles using multispectral optoacoustic tomography (MSOT) imaging. Journal of Pharmaceutical and Biomedical Analysis, 2020, 178, 112951. doi: 10.1016/j.jpba.2019.112951
  2. Katsumata, K.; Ishihara, J.; Mansurov, A.; Ishihara, A.; Raczy, M.M.; Yuba, E.; Hubbell, J.A. Targeting inflammatory sites through collagen affinity enhances the therapeutic efficacy of anti-inflammatory antibodies. Science Advances, 2019, 5(11), eaay1971. doi: 10.1126/sciadv.aay1971
  3. Mazur, C.; Powers, B.; Zasadny, K.; Sullivan, J.M.; Dimant, H.; Kamme, F.; Hesterman, J.; Matson, J.; Oestergaard, M.; Seaman, M.; Holt, R.W.; Qutaish, M.; Polyak, I.; Coelho, R.; Gottumukkala, V.; Gaut, C.M.; Berridge, M.; Albargothy, N.J.; Kelly, L.; Carare, R.O.; Hoppin, J.; Kordasiewicz, H.; Swayze, E.E.; Verma, A. Brain pharmacology of intrathecal antisense oligonucleotides revealed through multimodal imaging. JCI Insight, 2019, 4(20), 129240. doi: 10.1172/jci.insight.129240
  4. Bykov, Y.; Cohen, N.; Gabrielli, N.; Manenschijn, H.; Welsch, S.; Chlanda, P.; Kukulski, W.; Patil, K.R.R.; Schuldiner, M.; Briggs, J.A.G. High-throughput ultrastructure screening using electron microscopy and fluorescent barcoding. Journal of Cell Biology, 2019, 218(8), 2797–2811. doi: 10.1083/jcb.201812081
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