Sulfo-Cyanin 7 NHS-Ester

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Aminreaktiver Succinimidylester des wasserlöslichen Nahinfrarot-Farbstoffs Cyanin 7

Sulfo-Cyanin 7 ist ein fortschrittliches Analogon des Fluorophors Cy7® mit einer um 20 % höheren Quantenausbeute und besserer Photostabilität. Dieser Farbstoff ist insbesondere für die NIR-Bildgebung geeignet.

Die Nahinfrarot-Fluoreszenz-Bildgebung nutzt die Transparenz von biologischen Geweben in einem bestimmten Wellenlängenbereich. Die Detektionsmethode ist zerstörungsfrei und ermöglicht die Überwachung der Verteilung von markierten Molekülen in lebenden Organismen.

Das Reagenz Sulfo-Cyanin 7 NHS-Ester ermöglicht die unkomplizierte Markierung von Biomolekülen wie zum Beispiel Proteinen. Farbstoffmarkierte Moleküle können anschließend in in vivo-Forschungsarbeiten sowie für Versuche in der Arzneimittelentwicklung eingesetzt werden.

Dieses Reagenz ist gut wasserlöslich und insbesondere geeignet für die Markierung von empfindlichen Proteinen sowie von Proteinen, die anfällig für Denaturierung sind. Ein nicht sulfonierter Cyanin 7 NHS-Ester, der in organischer Phase löslich ist, ist ebenfalls erhältlich.

Absorptions- und Emissionsspektren des Fluorophors Sulfo-Cyanin 7

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TAMRA Fluoreszenzfarbstoff-Azid für die Click-Chemie

Allgemeine Eigenschaften

Erscheinungsform: dunkelgrünes Pulver
Molekülmasse: 827.94
Molekülformel: C41H46N3NaO10S2
Löslichkeit: gut löslich in Wasser, DMF, DMSO
Qualitätskontrolle: NMR 1H, HPLC-MS (95%)
Lagerungsbedingungen: Lagerbeständigkeit: 12 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C an einem lichtgeschützten Ort. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern.
Sicherheitsdatenblatt:: herunterladen

Spektrale Eigenschaften

Anregungsmaximum / nm: 750
ε / L⋅mol−1⋅cm−1: 240600
Emissionsmaximum / nm: 773
CF260: 0.04
CF280: 0.04

Zitierungen

  1. Ishihara, J.; Ishihara, A.; Potin, L.; Hosseinchi, P.; Fukunaga, K.; Damo, M.; Gajewski, T.F.; Swartz, M.A.; Hubbell, J.A. Improving Efficacy and Safety of Agonistic Anti-CD40 Antibody Through Extracellular Matrix Affinity. Molecular Cancer Therapeutics, in press. doi: 10.1158/1535-7163.MCT-18-0091
  2. Henderson, L.; Neumann, O.; Kaffes, C.; Zhang, R.; Marangoni, V.; Ravoori, M.K.; Kundra, V.; Bankson, J.; Nordlander, P.; Halas, N.J. Routes to Potentially Safer T1 Magnetic Resonance Imaging Contrast in a Compact Plasmonic Nanoparticle with Enhanced Fluorescence. ACS Nano, 2018, 12(8), 8214–8223. doi: 10.1021/acsnano.8b03368
  3. Bhatnagar, S.; Verma, K.D.; Hu, Y.; Khera, E.; Priluck, A.; Smith, D.E.; Thurber, G.M. Oral Administration and Detection of a Near-Infrared Molecular Imaging Agent in an Orthotopic Mouse Model for Breast Cancer Screening. Molecular Pharmaceutics, 2018, 15(5), 1746–1754. doi: 10.1021/acs.molpharmaceut.7b00994
  4. Gaspar, I.; Hövelmann, F.; Chamiolo, J.; Ephrussi, A.; Seitz, O. Quantitative mRNA Imaging with Dual Channel qFIT Probes to Monitor Distribution and Degree of Hybridization. ACS Chemical Biology, 2018, 13(3), 742–749. doi: 10.1021/acschembio.7b01007
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