Sulfo-Cyanin 7.5 NHS-Ester

NHS-Ester Nahinfrarot-Imaging Sulfo-Cyanin 7.5 Proteinmarkierung
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Sulfo-Cyanin 7.5 ist ein wasserlöslicher Fluorophor für NIR-Imaging-Anwendungen. Struktur und Spektren des Farbstoffs ähneln denen von Indocyaningrün (ICG), das bereits seit geraumer Zeit für Untersuchungen im Menschen eingesetzt wird. Im Gegensatz zu ICG besitzt Sulfo-Cyanin 7.5 eine Trimethylenbrücke, die die Fluoreszenzquantenausbeute gegenüber ICG erhöht. Der Fluorophor trägt außerdem einen Linkerarm für die Markierung von Proteinen, Peptiden und anderen Molekülen. Es handelt sich hier um ein NHS-Ester-Derivat für die Reaktion mit Aminogruppen.

Sulfo-Cyanin 7.5 NHS-Ester
Sulfo-Cyanin 7.5 NHS-Ester
Sulfo-Cyanin 7.5 NHS-Ester
Struktur von Sulfo-Cyanin 7.5 NHS-Ester
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Absorptions- und Emissionsspektren von Sulfo-Cyanin 7.5

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Kupfer(II)-TBTA-Komplex, 10 mM in 55 %-igem DMSO

Katalysator für die Konjugationsreaktion der Click-Chemie

Sulfo-Cyanin-7.5-carbonsäure

Wasserlöslicher Nahinfrarot-Fluorophor, der aufgrund seiner vier Sulfogruppen sehr hydrophil ist.

Allgemeine Eigenschaften

Erscheinungsform: dunkelgrüner Feststoff
Gewichtsspezifisches M+-Inkrement: 950.2
Molekülmasse: 1180.47
Molekülformel: C49H48N3K3O16S4
Löslichkeit: gut in Wasser, DMF, DMSO
Qualitätskontrolle: NMR 1H, HPLC-MS (95 %)
Lagerungsbedingungen: Lagerung: 12 Monate nach Wareneingang bei −20 °C im Dunkeln. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern.
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Product specifications

Spektrale Eigenschaften

Anregungs-/Absorptionsmaximum / nm: 778
ε / L⋅mol−1⋅cm−1: 222000
Emissionsmaximum / nm: 797
CF260: 0.09
CF280: 0.09

Zitierungen

  1. González, M.I.; González-Arjona, M.; Santos-Coquillat, A.; Vaquero, J.; Vázquez-Ogando, E.; de Molina, A.; Peinado, H.; Desco, M.; Salinas, B. Covalently Labeled Fluorescent Exosomes for In Vitro and In Vivo Applications. Biomedicines, 2021, 9, 81. doi: 10.3390/biomedicines9010081
  2. Park, B.G.; Kim, Y.J.; Min, J.H.; Cheong, T.-C.; Nam, S.H.; Cho, N.-H.; Kim, Y.K.; Lee, K.B. Assessment of Cellular Uptake Efficiency According to Multiple Inhibitors of Fe3O4-Au Core-Shell Nanoparticles: Possibility to Control Specific Endocytosis in Colorectal Cancer Cells. Nanoscale Research Letters, 2020, 15, 165. doi: 10.1186/s11671-020-03395-w
  3. Ju, Y.; Guo, H.; Yarber, F.; Edman, M.C.; Peddi, S.; Janga, S.R.; MacKay, J.A.; Hamm-Alvarez, S.F. Molecular Targeting of Immunosuppressants Using a Bi-functional Elastin-Like Polypeptide. Bioconjugate Chemistry, 2019, 30(9), 2358–2372. doi: 10.1021/acs.bioconjchem.9b00462
  4. Ruiz, A.; Bravo, D.; Duarte, A.; Adler, R.S.; Raya, J.G. Accuracy of Ultrasound-Guided versus Landmark-Guided Intra-articular Injection for Rat Knee Joints. Ultrasound in Medicine and Biology, 2019, 45(10), 2787–2796. doi: 10.1016/j.ultrasmedbio.2019.06.403
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