Sulfo-Cyanin 3 NHS-Ester
| Artikel-Nr. | Packungseinheit | Preis | Vorlaufzeit | Jetzt kaufen |
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| 11320 | 1 mg | $110.00 | Auf Lager | |
| 21320 | 5 mg | $290.00 | Auf Lager | |
| 41320 | 25 mg |
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| 51320 | 50 mg |
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| 61320 | 100 mg |
$1990.00
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Wasserlöslicher, aminoreaktiver Fluoreszenzfarbstoff Sulfo-Cyanin 3 für die effiziente Markierung von Proteinen und Peptiden in rein wässriger Lösung ohne Notwendigkeit der Verwendung eines organischen Hilfslösungsmittels. Ideal geeignet für Proteine mit geringer Löslichkeit und für Proteine, die anfällig für Denaturierung sind.
Dieses Produkt ist ein sulfonierter, hydrophiler und wasserlöslicher Farbstoff. Ein nicht sulfonierter Cyanin 3 NHS-Ester ist ebenfalls erhältlich. Sulfo-Cyanin 3 NHS-Ester ist ein Analogon zu Cy3® NHS-Ester, und kann als Ersatz für Cy3®, Alexa Fluor® 546 und DyLight 549 eingesetzt werden.
Absorptions- und Emissionsspektren des Fluorophors Sulfo-Cyanin 3
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ROX-azid, 5-Isomer
Azid des Fluoreszenzfarbstoffs ROX (auch bekannt als Rhodamin X oder Rhodamin 101) für die Markierung von Biomolekülen mittels Click-ChemieSulfo-Cyanin-5-amin
Aminderivat des sulfonierten Cyanin 5 für die Konjugation mit elektrophilen Gruppen und enzymatische Markierung durch TransaminierungSulfo-Cyanin-5-alkin
ein wasserlösliches Cyanin 5 Alkinderivat für die Click-ChemieAllgemeine Eigenschaften
| Erscheinungsform: | dunkelrote Kristalle |
| Molekülmasse: | 735.80 |
| Molekülformel: | C34H38N3NaO10S2 |
| Löslichkeit: | sehr gut löslich in Wasser, gut löslich in polaren organischen Lösungsmitteln (DMF, DMSO) |
| Qualitätskontrolle: | NMR 1H, HPLC-MS (95%) |
| Lagerungsbedingungen: | Lagerbeständigkeit: 12 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C an einem lichtgeschützten Ort. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern. |
| Sicherheitsdatenblatt:: | herunterladen |
Spektrale Eigenschaften
| Anregungsmaximum / nm: | 548 |
|
ε |
162000 |
| Emissionsmaximum / nm: | 563 |
| Fluoreszenz-Quantenausbeute: | 0.1 |
| CF260: | 0.03 |
| CF280: | 0.06 |
Zitierungen
- Meena, G.G.; Jain, A.; Parks, J.; Stambaugh, A.; Patterson, J.; Hawkins, A.; Schmidt, H. Integration of sample preparation and analysis on an optofluidic chip for multi-target disease detection. Lab on a Chip, in press. doi: 10.1039/c8lc00966j
- Zadeh, P.S.N.; do Valle Gomes, M.Z.; Abrahamsson, M.; Palmqvist, A.; Åkerman, B. Measuring Viscosity inside Mesoporous Silica Using Protein-Bound Molecular Rotor Probe. Physical Chemistry Chemical Physics, 2018, 20(36), 23202–23213. doi: 10.1039/C8CP01063C
- Gu, R.; Oweida, T.; Yingling, Y.G.; Chilkoti, A.; Zauscher, S. Enzymatic synthesis of nucleobase-modified single-stranded DNA offers tunable resistance to nuclease degradation. Biomacromolecules, 2018, 19(8), 3525–3535. doi: 10.1021/acs.biomac.8b00816
- Zadeh, P.S.N.; do Valle Gomes, M.Z.; Åkerman, B.; Palmqvist, A.E.C. Förster resonance energy transfer study of the improved biocatalytic conversion of CO2 to formaldehyde by co-immobilization of enzymes in siliceous mesostructured cellular foams. ACS Catalysis, 2018, 8(8), 7251–7260. doi: 10.1021/acscatal.8b01806
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