Sulfo-Cyanin3 NHS-Ester

NHS-Ester Sulfo-Cyanin3 Proteinmarkierung

Artikel-Nr.	Packungseinheit	Preis	Vorlaufzeit
11320	1 mg	$91	Auf Lager
21320	5 mg	$119	Auf Lager
41320	25 mg	$395	Auf Lager
51320	50 mg	$729	Auf Lager
61320	100 mg	$1290	Auf Lager

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Wasserlöslicher, aminoreaktiver Fluoreszenzfarbstoff Sulfo-Cyanin3 für die effiziente Markierung von Proteinen und Peptiden in rein wässriger Lösung ohne Notwendigkeit der Verwendung eines organischen Hilfslösungsmittels. Ideal geeignet für Proteine mit geringer Löslichkeit und für Proteine, die anfällig für Denaturierung sind.

Dieses Produkt ist ein sulfonierter, hydrophiler und wasserlöslicher Farbstoff. Ein nicht sulfonierter Cyanin 3 NHS-Ester ist ebenfalls erhältlich. Sulfo-Cyanin3 NHS-Ester ist ein Analogon zu Cy3^® NHS-Ester, und kann als Ersatz für Cy3^® und DyLight 549 eingesetzt werden.

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Absorptions- und Emissionsspektren von Fluorophors Sulfo-Cyanin3

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Cyclooctin-Derivat von Fluorescein (FAM) für kupferfreie Click-Chemie-Reaktionen mit Aziden. Reines 6-Isomer von Fluorescein.

Allgemeine Eigenschaften

Erscheinungsform:	dunkelrote Kristalle
Molekülmasse:	751.91
CAS-Nummer:	1424150-38-8 (sodium salt); 1424433-17-9, 1518643-34-9 (inner salt)
Molekülformel:	C₃₄H₃₈N₃KO₁₀S₂
IUPAC-Name:	3H-Indolium, 2-[3-(1,3-dihydro-1,3,3-trimethyl-5-sulfo-2H-indol-2-ylidene)-1-propen-1-yl]-1-[6-[(2,5-dioxo-1-pyrrolidinyl)oxy]-6-oxohexyl]-3,3-dimethyl-5-sulfo-, inner salt, sodium salt
Löslichkeit:	sehr gut löslich in Wasser, gut löslich in polaren organischen Lösungsmitteln (DMF, DMSO)
Qualitätskontrolle:	NMR ¹H, HPLC-MS (95%)
Lagerungsbedingungen:	Lagerbeständigkeit: 12 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C an einem lichtgeschützten Ort. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern.
Sicherheitsdatenblatt:	herunterladen
	Product specifications

Spektrale Eigenschaften

Anregungs-/Absorptionsmaximum / nm:	548
ε / L⋅mol⁻¹⋅cm⁻¹:	162000
Emissionsmaximum / nm:	563
Fluoreszenz-Quantenausbeute:	0.1
CF₂₆₀:	0.03
CF₂₈₀:	0.06

Zitierungen

Yang, B.; Picchetti, P.; Wang, Y.; Wang, W.; Seeger, C.; Bozov, K.; Malik, S.; Mallach, D.; Schäfer, A.H.; Ibrahim, M.; Hirtz, M.; Powell, A.K. Patterned immobilization of polyoxometalate-loaded mesoporous silica particles via amine-ene Michael additions on alkene functionalized surfaces. Scientific Reports, 2024, 14, 1249. doi: 10.1038/s41598-023-50846-2
Zhao, J.; Elgeti, M.; O’Brien, E.S.; Sár, C.P.; EI Daibani, A.; Heng, J.; Sun, X.; White, E.; Che, T.; Hubbell, W.L.; Kobilka, B.K.; Chen, C. Ligand efficacy modulates conformational dynamics of the µ-opioid receptor. Nature, 2024, 629(8011), 474-480. doi: 10.1038/s41586-024-07295-2
Lebedeva, N.A.; Anarbaev, R.O.; Maltseva, E.A.; Sukhanova, M.V.; Rechkunova, N.I.; Lavrik, O.I. DNA Repair Protein XRCC1 Stimulates Activity of DNA Polymerase λ under Conditions of Microphase Separation. International Journal of Molecular Sciences, 2024, 25(13), 6927. doi: 10.3390/ijms25136927
Peña-Díaz, S.; Chao, J.D.; Rens, C.; Haghdadi, H.; Zheng, X.; Flanagan, K.; Ko, M.; Shapira, T.; Richter, A.; Maestre-Batlle, D.; Canseco, J.O.; Gutierrez, M.G.; Duc, K.D.; Pelech, S.; Av-Gay, Y. Glycogen synthase kinase 3 inhibition controls Mycobacterium tuberculosis infection. iScience, 2024, 27(8), 110555. doi: 10.1016/j.isci.2024.110555

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