Sulfo-Cyanin3 NHS-Ester

NHS-Ester Sulfo-Cyanin3 Proteinmarkierung

Artikel-Nr.	Packungseinheit	Preis	Vorlaufzeit
11320	1 mg	$93.99	Auf Lager
21320	5 mg	$169.90	Auf Lager
41320	25 mg	$629.90	Auf Lager
51320	50 mg	$1150.00	Auf Lager
61320	100 mg	$1799.00	Auf Lager

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Wasserlöslicher, aminoreaktiver Fluoreszenzfarbstoff Sulfo-Cyanin3 für die effiziente Markierung von Proteinen und Peptiden in rein wässriger Lösung ohne Notwendigkeit der Verwendung eines organischen Hilfslösungsmittels. Ideal geeignet für Proteine mit geringer Löslichkeit und für Proteine, die anfällig für Denaturierung sind.

Dieses Produkt ist ein sulfonierter, hydrophiler und wasserlöslicher Farbstoff. Ein nicht sulfonierter Cyanin 3 NHS-Ester ist ebenfalls erhältlich. Sulfo-Cyanin3 NHS-Ester ist ein Analogon zu Cy3^® NHS-Ester, und kann als Ersatz für Cy3^® und DyLight 549 eingesetzt werden.

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Absorptions- und Emissionsspektren von Fluorophors Sulfo-Cyanin3

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Allgemeine Eigenschaften

Erscheinungsform:	dunkelrote Kristalle
Molekülmasse:	751.91
CAS-Nummer:	1424150-38-8 (sodium salt); 1424433-17-9, 1518643-34-9 (inner salt)
Molekülformel:	C₃₄H₃₈N₃KO₁₀S₂
IUPAC-Name:	3H-Indolium, 2-[3-(1,3-dihydro-1,3,3-trimethyl-5-sulfo-2H-indol-2-ylidene)-1-propen-1-yl]-1-[6-[(2,5-dioxo-1-pyrrolidinyl)oxy]-6-oxohexyl]-3,3-dimethyl-5-sulfo-, inner salt, sodium salt
Löslichkeit:	sehr gut löslich in Wasser, gut löslich in polaren organischen Lösungsmitteln (DMF, DMSO)
Qualitätskontrolle:	NMR ¹H, HPLC-MS (95%)
Lagerungsbedingungen:	Lagerbeständigkeit: 12 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C an einem lichtgeschützten Ort. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern.
Sicherheitsdatenblatt:	herunterladen
	Product specifications

Spektrale Eigenschaften

Anregungs-/Absorptionsmaximum / nm:	548
ε / L⋅mol⁻¹⋅cm⁻¹:	162000
Emissionsmaximum / nm:	563
Fluoreszenz-Quantenausbeute:	0.1
CF₂₆₀:	0.03
CF₂₈₀:	0.06

Zitierungen

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Eskilson, O.; Wiman, E.; Reustle, N.; Langwagen, J.; Sotra, Z.; Svärd, A.; Selegård, R.; Baş, Y.; Berglund, L.; Oksman, K.; Bengtsson, T.; Junker, J. P. E.; Khalaf, H.; Aili, D. Nanocellulose Wound Dressings with Integrated Protease Sensors for Detection of Wound Pathogens. ACS Sens, 2025, 10(6), 3953–3963. doi: 10.1021/acssensors.4c03428
Saunders, R. A.; Allen, W. E.; Pan, X.; Sandhu, J.; Lu, J.; Lau, T. K.; Smolyar, K.; Sullivan, Z. A.; Dulac, C.; Weissman, J. S.; Zhuang, X. Perturb-Multimodal: A Platform for Pooled Genetic Screens with Imaging and Sequencing in Intact Mammalian Tissue. Cell, 2025, 188(17), 4790-4809.e22. doi: 10.1016/j.cell.2025.05.022
Krass, M.; Kolster, M.; Valenzuela, J. I.; Moldenhauer, L.; Kagelmacher, M.; Niesler, N.; Weng, A.; Zerial, M.; Nagel, G.; Fuchs, H. Recombinant Expression of a Ready‐to‐Use EGF Variant Equipped With a Single Conjugation Site for Click‐Chemistry. Engineering in Life Sciences, 2025, 25(3), e70015. doi: 10.1002/elsc.70015

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