Sulfo-Cyanin3 NHS-Ester
Artikel-Nr. | Packungseinheit | Preis | Vorlaufzeit | Jetzt kaufen |
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Wasserlöslicher, aminoreaktiver Fluoreszenzfarbstoff Sulfo-Cyanin3 für die effiziente Markierung von Proteinen und Peptiden in rein wässriger Lösung ohne Notwendigkeit der Verwendung eines organischen Hilfslösungsmittels. Ideal geeignet für Proteine mit geringer Löslichkeit und für Proteine, die anfällig für Denaturierung sind.
Dieses Produkt ist ein sulfonierter, hydrophiler und wasserlöslicher Farbstoff. Ein nicht sulfonierter Cyanin 3 NHS-Ester ist ebenfalls erhältlich. Sulfo-Cyanin3 NHS-Ester ist ein Analogon zu Cy3® NHS-Ester, und kann als Ersatz für Cy3® und DyLight 549 eingesetzt werden.
Absorptions- und Emissionsspektren von Fluorophors Sulfo-Cyanin3
![Absorptions- und Emissionsspektren von Fluorophors Sulfo-Cyanin3](https://static.lumiprobe.us/img/spectra/sulfo-Cy3_absorbance_emission.png)
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Aminreaktiver NHS-Ester des NIR-Fluoreszenzfarbstoffes Cyanin7.5.Allgemeine Eigenschaften
Erscheinungsform: | dunkelrote Kristalle |
Molekülmasse: | 751.91 |
CAS-Nummer: | 1424150-38-8 (sodium salt); 1424433-17-9, 1518643-34-9 (inner salt) |
Molekülformel: | C34H38N3KO10S2 |
IUPAC-Name: | 3H-Indolium, 2-[3-(1,3-dihydro-1,3,3-trimethyl-5-sulfo-2H-indol-2-ylidene)-1-propen-1-yl]-1-[6-[(2,5-dioxo-1-pyrrolidinyl)oxy]-6-oxohexyl]-3,3-dimethyl-5-sulfo-, inner salt, sodium salt |
Löslichkeit: | sehr gut löslich in Wasser, gut löslich in polaren organischen Lösungsmitteln (DMF, DMSO) |
Qualitätskontrolle: | NMR 1H, HPLC-MS (95%) |
Lagerungsbedingungen: | Lagerbeständigkeit: 12 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C an einem lichtgeschützten Ort. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern. |
Sicherheitsdatenblatt: | herunterladen |
Product specifications |
Spektrale Eigenschaften
Anregungs-/Absorptionsmaximum / nm: | 548 |
ε |
162000 |
Emissionsmaximum / nm: | 563 |
Fluoreszenz-Quantenausbeute: | 0.1 |
CF260: | 0.03 |
CF280: | 0.06 |
Zitierungen
- Yang, B.; Picchetti, P.; Wang, Y.; Wang, W.; Seeger, C.; Bozov, K.; Malik, S.; Mallach, D.; Schäfer, A.H.; Ibrahim, M.; Hirtz, M.; Powell, A.K. Patterned immobilization of polyoxometalate-loaded mesoporous silica particles via amine-ene Michael additions on alkene functionalized surfaces. Scientific Reports, 2024, 14, 1249. doi: 10.1038/s41598-023-50846-2
- Takahashi, S.; Homma, K. The molecular principles underlying diverse functions of the SLC26 family of proteins. The Journal of Biological Chemistry, 2024, 300(5), 107261. doi: 10.1016/j.jbc.2024.107261
- Zhao, J.; Elgeti, M.; O’Brien, E.S.; Sár, C.P.; EI Daibani, A.; Heng, J.; Sun, X.; White, E.; Che, T.; Hubbell, W.L.; Kobilka, B.K.; Chen, C. Ligand efficacy modulates conformational dynamics of the µ-opioid receptor. Nature, 2024, 629(8011), 474-480. doi: 10.1038/s41586-024-07295-2
- Carias, A.M.; Schneider, J.R.; Madden, P.; Lorenzo-Redondo, R.; Araínga, M.; Pegu, A.; Cianci, G.C.; Maric, D.; Villinger, F.; Mascola, J.R.; Veazey, R.S.; Hope, T.J. Anatomic distribution of intravenous injected IgG takes approximately 1 week to achieve stratum corneum saturation in vaginal tissues. The Journal of Immunology, 2023, 207(2), 505-511. doi: 10.4049/jimmunol.2100253
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