dsGreen für Echtzeit-PCR, 100×

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dsGreen dient dem sensitiven Nachweis doppelsträngiger DNA. Die hohe Nachweisempfindlichkeit und Selektivität für dsDNA ermöglichen die Anwendung von dsGreen als universelles Nachweisreagenz in der qPCR. Es besteht keine Notwendigkeit für den Einsatz markierter Sonden – unmarkierte Primer sind hierfür ausreichend.

Im Unterschied zu dem dsGreen-Präparat für die Gelfärbung ist diese Formulierung speziell für den Einsatz in der Echtzeit-PCR (Polymerasekettenreaktion) bestimmt. Sie zeichnet sich durch folgende Eigenschaften aus:

  • Die Konzentration des Farbstoffes ist auf den Einsatz in der Realtime-PCR ausgelegt und entsprechend sorgfältig eingestellt, sodass die Experimente von Charge zu Charge gut reproduzierbar bleiben.
  • PCR-erprobte Präparation – garantierte Qualität
  • Niedriger Fluoreszenz-Hintergrund – starke Intensitätszunahme durch Bindung von dsDNA.

Echtzeit-PCR

Echtzeit-PCR

Anregungs- und Emissionsspektra des dsDNA-Komplexes mit dsGreen

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Allgemeine Eigenschaften

Erscheinungsform: hellorangefarbene Lösung
Qualitätskontrolle: NMR 1H, HPLC-MS (95 %), PCR-Test
Lagerungsbedingungen: Lagerung: 24 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C an einem lichtgeschützten Ort. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden.
Sicherheitsdatenblatt:: herunterladen
Product specifications

Spektrale Eigenschaften

Anregungs-/Absorptionsmaximum / nm: 454
ε / L⋅mol−1⋅cm−1: 73000
Emissionsmaximum / nm: 524
Fluoreszenz-Quantenausbeute: 0,8

Zitierungen

  1. Carter, J.G.; Iturbe, L.O.; Duprey, J.-L.H.A.; Carter, I.R.; Southern, C.D.; Rana, M.; Bosworth, A. Sub-5-minute Detection of SARS-CoV-2 RNA using a Reverse Transcriptase-Free Exponential Amplification Reaction, RTF-EXPAR. medRxiv, preprint. doi: 10.1101/2020.12.31.20248236
  2. Morozov, V.N.; Klimovich, M.A.; Kolyvanova, M.A.; Dement'eva, O.V.; Rudoy, V.M.; Kuzmin, V.A. Interaction of Gold Nanoparticles with Cyanine Dyes in Cholesteric DNA Submicroparticles. High Energy Chemistry, 2021, 55(5), 341–348. doi: 10.1134/S0018143921050088
  3. Carter, J.G.; Iturbe, L.O.; Duprey, J.-L.H.A.; Carter, I.R.; Southern, C.D.; Rana, M.; Whalley, C.M.; Bosworth, A.; Beggs, A.D.; Hicks, M.R.; Tucker, J.H.R.; Dafforn, T.R. Ultrarapid detection of SARS-CoV-2 RNA using a reverse transcription{\textendash}free exponential amplification reaction, RTF-EXPAR. Proceedings of the National Academy of Sciences of the U.S.A., 2021, 118(35), e2100347118. doi: 10.1073/pnas.2100347118
  4. Fang, Y.; Coulter, J.A.; Wu, J.; Liu, L.; Li, X.; Dong, Y.; Ma, L.; Pu, Y.; Sun, B.; Niu, Z.; Jin, J.; Zhao, Y.; Mi, W.; Xu, Y.; Sun, W. Identification of differentially expressed genes involved in amino acid and lipid accumulation of winter turnip rape (Brassica rapa L.) in response to cold stress. PloS ONE, 2021, 16(2), e0245494. doi: 10.1371/journal.pone.0245494
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