Cyanin-5-hydrazid
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Cyanin-5-hydrazid ist ein Reaktivfarbstoff für die Markierung von Aldehyden und Ketonen, ein Analogon zu Cy5®-hydrazid.
Dieser Fluoreszenzfarbstoff reagiert problemlos und fast quantitativ mit verschiedenen Carbonylgruppen, die in Biomolekülen vorkommen. Beispiele sind Proteine, die oxidativem Stress ausgesetzt sind, Glykoproteine (einschließlich Antikörpern), die durch Oxidation mit Periodat voraktiviert wurden, und Oligonukleotide mit Aldehydresten.
Cyanin-5-hydrazid kann anstelle der carbonylreaktiven Farbstoffe Cy5®, Alexa Fluor® 647, DyLight 649 eingesetzt werden.
Absorptions- und Emissionsspektren von Cyanin 5
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Cyanin-3-DBCO
Cyanin-3-dibenzocyclooctin (DBCO oder ADIBO) ist ein Cycloalkin-Derivat des Fluorophors für kupferfreie Click-Chemie-ReaktionenSulfo-Cyanin-3-carbonsäure
Wasserlöslicher Fluoreszenzfarbstoff Sulfo-Cyanin 3, nichtaktivierte CarbonsäureBDP-TMR-azid
Borondipyrromethen-Farbstoff mit einer Azidogruppe. Die spektralen Eigenschaften ähneln denen von TAMRA. Aufgrund der langen Fluoreszenzlebensdauer ist BDP-TMR insbesondere für Fluoreszenzpolarisationsmessungen geeignet.Allgemeine Eigenschaften
| Erscheinungsform: | dunkelblaues Pulver |
| Molekülmasse: | 569.61 |
| CAS-Nummer: | 1427705-31-4 |
| Molekülformel: | C32H42Cl2N4O |
| Löslichkeit: | mäßig löslich in Wasser, gut löslich in polaren organischen Lösungsmitteln (DMF, DMSO, Alkohole) |
| Qualitätskontrolle: | NMR 1H, HPLC-MS (95%) |
| Lagerungsbedingungen: | Lagerbeständigkeit: 24 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C an einem lichtgeschützten Ort. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern. |
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| Product specifications |
Spektrale Eigenschaften
| Anregungsmaximum / nm: | 646 |
|
ε |
250000 |
| Emissionsmaximum / nm: | 662 |
| Fluoreszenz-Quantenausbeute: | 0.2 |
| CF260: | 0.03 |
| CF280: | 0.04 |
Zitierungen
- Imlimthan, S.; Correia, A.; Figueiredo, P.; Lintinen, K.; Balasubramanian, V.; Airaksinen, A.J.; Kostiainen, M.A.; Santos, H.A.; Sarparanta, M. Systematic In Vitro Biocompatibility Studies of Multimodal Cellulose Nanocrystal and Lignin Nanoparticles. Journal of Biomedical Materials Research. Part A, 2020, 108(3), 770–783. doi: 10.1002/jbm.a.36856
- Wang, J.; Johnson, A.G.; Lapointe, C.P.; Choi, J.; Prabhakar, A.; Chen, D.-H.; Petrov, A.N.; Puglisi, J.D. eIF5B gates the transition from translation initiation to elongation. Nature, 2019, 573, 605–608. doi: 10.1038/s41586-019-1561-0
- Boone, C.; Grove, R.; Adamcova, D.; Braga, C.; Adamec, J. Revealing oxidative damage to enzymes of carbohydrate metabolism in yeast: An integration of 2D DIGE, quantitative proteomics and bioinformatics. Proteomics, 2016, 16(13), 1889–1903. doi: 10.1002/pmic.201500546
- Yoshimura, T.; Harashima, M.; Kurogi, K.; Suiko, M.; Liu, M.-C.; Sakakibara, Y. A novel procedure for the assessment of the antioxidant capacity of food components. Analytical Biochemistry, 2016, 507, 7–12. doi: 10.1016/j.ab.2016.05.002
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