Färbung des Golgi-Apparats mit BDP-markierten Ceramiden Vorbereitung der Lösungen
Ceramide sind Vorläufer von Sphingolipiden, die aus Sphingosin und einer Fettsäure verbunden durch eine Amidbindung bestehen. BDP-Ceramide sind synthetische fluoreszierende Lipide, Konjugate von BDP-Fluorophoren mit Sphingosin. Innerhalb der Zelle werden BDP-Ceramide in die Membranen des Golgi-Apparats eingebaut, weshalb diese Farbstoffe in der Zellbiologie zur Visualisierung des Golgi-Apparats in lebenden und fixierten Zellen mit Fluoreszenzmikroskopie weit verbreitet sind.
Vorbereitung von Lösungen
1.1 Stammlösungen
- Lösen Sie 50 μg BDP FL Ceramid in 87,2 μL DMSO auf, um eine Stammlösung von 1 mM zu erhalten.
- Lösen Sie 250 μg BDP FL Ceramid in 436 μL DMSO auf, um eine Stammlösung von 1 mM zu erhalten.
- Lösen Sie 50 μg BDP TMR Ceramid in 73,6 μL DMSO auf, um eine Stammlösung von 1 mM zu erhalten.
- Lösen Sie 250 μg BDP TMR Ceramid in 368 μL DMSO auf, um eine Stammlösung von 1 mM zu erhalten.
- Lösen Sie 50 μg BDP TR Ceramid in 70,8 μL DMSO auf, um eine Stammlösung von 1 mM zu erhalten.
- Lösen Sie 250 μg BDP TR Ceramid in 354 μL DMSO auf, um eine Stammlösung von 1 mM zu erhalten.
Lagern Sie die Stammlösungen bei −20 °C oder −80 °C vor Licht geschützt. Vermeiden Sie wiederholte Gefrier-Tau-Zyklen.
1.2 Färbungslösung
- Messen Sie 10 mL Hanks’ gepufferte Kochsalzlösung mit 10 mM HEPES (HBSS/HEPES), pH 7,4, in ein 50 mL Kunststoffröhrchen. Andere serumfreie ausgewogene Kochsalzlösungen, wie z. B. PBS, sind ebenfalls für diesen Zweck geeignet. (Optional) Fügen Sie der Pufferlösung 1 mM Ca2+ und 0,5 mM Mg2+ hinzu, um zu verhindern, dass lebende Zellen sich abrunden und von Glasflächen ablösen.
- Geben Sie 3,4 mg (0,34 mg/mL) entfettetes BSA in das Röhrchen mit Puffer.
- Fügen Sie 50 µL der 1 mM Ceramid-Stammlösung hinzu, um eine Arbeitslösung von 5 µM Ceramid / 5 µM BSA zu erhalten. Die Verdünnung der Ceramide hängt vom Zelltyp und der Dichte ab und sollte experimentell bestimmt werden.
(Optional) Fügen Sie 1 mM Ca2+ und 0,5 mM Mg2+ zur Pufferlösung hinzu, um die Bildung lebender Zellen zu verhindern Aufrunden und vom Glas lösen.
Die resultierende Ceramid/BSA-Komplexlösung kann in Kunststoffröhrchen bei −20 °C aufbewahrt werden.
Zellfärbung
2.1 Lebende Zellen
- Zellen auf einem sterilen Deckglas wachsen lassen. Adhärente Zellen können direkt auf dem Deckglas gefärbt werden.
- Das Medium vom Deckglas absaugen.
- Zellen mit einem geeigneten Medium (wie HBSS/HEPES) abspülen.
- Die Zellen 30 Minuten lang bei 4 °C in einer 5 µM Ceramid/BSA-Lösung inkubieren.
- Die Zellen mehrmals mit dem eiskalten Medium abspülen.
- Spülen Sie die Zellen viermal 30 Minuten lang bei Raumtemperatur in einer Lösung aus entfettetem BSA (0,34 mg/ml) in HBSS/HEPES.
- Die Zellen weitere 30 Minuten lang bei 37 °C in frischem Medium inkubieren.
- Die Zellen in frischem Medium abspülen.
- (Optional) Gefärbte Zellen können für 2 Minuten bei 4 °C in 4% Formaldehyd fixiert werden. Fixierte Zellen zweimal mit PBS waschen.
- Für die Fluoreszenzmikroskopie das Deckglas mit den gefärbten Zellen umdrehen und zwischen das Objektiv und das Deckglas legen.
2.2 Fixierte Zellen
- Zellen 5 Minuten lang bei 4 °C in 4% Formaldehyd fixieren.
- Fixierte Zellen zweimal jeweils 5 Minuten lang in PBS waschen.
- Die Zellen 30 Minuten lang bei 4 °C in einer 5 µM Ceramid/BSA-Lösung in PBS inkubieren.
- Spülen Sie die Zellen viermal 30 Minuten lang bei Raumtemperatur in einer Lösung aus entfettetem BSA (0,34 mg/ml) in PBS.
- Die Zellen dreimal in PBS abspülen.
- Für die Fluoreszenzmikroskopie die Zellen unter einem Deckglas mit einem Montagemedium montieren.
Absorbtions-maximum* | Emissions-maximum* | |
---|---|---|
BDP FL | 503 nm | 509 nm** |
BDP TMR | 542 nm | 574 nm |
BDP TR | 589 nm | 616 nm |
*Absorptions- und Fluoreszenzemaxima wurden in Methanol bestimmt. Werte in markierten Zellen sind ähnlich.
**BDP FL-markierte Ceramide emittieren auch rote Fluoreszenz (~620 nm) in Zellen.
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