BDP FL NHS-Ester
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BDP FL NHS-Ester ist ein fortschrittlicher Fluoreszenzfarbstoff für den 488-nm-Kanal, ein verbesserter Ersatz für FAM (Fluorescein) und ein Äquivalent zu BODIPY® FL NHS-Ester. Es handelt sich um einen aminreaktiven Farbstoff für die Markierung von Proteinen und Peptiden.
Während Anregungs- und Emissionsspektrum des BDP-FL-Fluorophors die FAM-Kanäle bedienen, bietet dieser Fluorophor deutlich höhere Photostabilität und herausragende Helligkeit. Das Emissionsspektrum von BDP FL ist schmaler als das von FAM. Man erhält dadurch höhere Sensitivität mit Monochromator-Geräten, bei denen die Emissionswellenlänge auf das Maximum des Fluorophors eingestellt werden kann.
Der Farbstoff ist neutral, besitzt eine geringe Molekülmasse und behält auch nach Konjugation mit Biomolekülen eine gute Quantenausbeute.
Dieser Fluorophor dient als Alternative zu Fluorescein (FAM), BODIPY® FL, Alexa Fluor® 488, DyLight 488, Cy2® und anderen Fluoreszenzfarbstoffen für den 488-nm-Kanal.
Absorptions- und Emissionsspektren von BDP FL
Empfohlenes Protokoll
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| Erscheinungsform: | oranger Feststoff |
| Gewichtsspezifisches M+-Inkrement: | 274.1 |
| Molekülmasse: | 389.16 |
| CAS-Nummer: | 146616-66-2 |
| Molekülformel: | C18H18BF2N3O4 |
| Löslichkeit: | löslich in organischen Lösungsmitteln (DMSO, DMF, Dichlormethan), geringe Löslichkeit in Wasser |
| Qualitätskontrolle: | NMR 1H, HPLC-MS (95+ %) |
| Lagerungsbedingungen: | Lagerung: 12 Monate nach Empfang bei −20 °C im Dunkeln. Transport: bei Raumtemperatur für bis zu 3 Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern. |
| Sicherheitsdatenblatt:: | herunterladen |
| Product specifications |
Spektrale Eigenschaften
| Anregungsmaximum / nm: | 503 |
|
ε |
92000 |
| Emissionsmaximum / nm: | 509 |
| Fluoreszenz-Quantenausbeute: | 0.97 |
| CF260: | 0.015 |
| CF280: | 0.027 |
Zitierungen
- Pereira de Sousa, I.; Gourmel, C.; Berkovska, O.; Burger, M.; Leroux, J.-C. A microparticulate based formulation to protect therapeutic enzymes from proteolytic digestion: phenylalanine ammonia lyase as case study. Scientific Reports, 2020, 10, 3651. doi: 10.1038/s41598-020-60463-y
- Viegas, A.; Dollinger, P.; Verma, N.; Kubiak, J.; Viennet, T.; Seidel, C.A.M.; Gohlke, H.; Etzkorn, M.; Kovacic, F.; Jaeger, K.-E. Structural and dynamic insights revealing how lipase binding domain MD1 of Pseudomonas aeruginosa foldase affects lipase activation. Scientific Reports, 2020, 10, 3578. doi: 10.1038/s41598-020-60093-4
- Korevaar, P.A.; Kaplan, C.N.; Grinthal, A.; Rust, R.M.; Aizenberg, J. Non-equilibrium signal integration in hydrogels. Nature Communications, 2020, 11, 386. doi: 10.1038/s41467-019-14114-0
- Martin, C.; Brachet, G.; Colas, C.; Allard-Vannier, E.; Kizlik-Masson, C.; Esnault, C.; Respaud, R.; Denevault-Sabourin, C.; Chourpa, I.; Gouilleux-Gruart, V.; Viaud-Massuard, M.-C.; Joubert, N. In Vitro Characterization and Stability Profiles of Antibody-Fluorophore Conjugates Derived from Interchain Cysteine Cross-Linking or Lysine Bioconjugation. Pharmaceuticals, 2019, 12(4), 176. doi: 10.3390/ph12040176
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