QuDye® Protein-Quantifizierungskit
| Artikel-Nr. | Packungseinheit | Preis | Vorlaufzeit | Jetzt kaufen |
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| A5102 |
30 assays
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–
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1 Tagen. | |
| 15102 |
100 assays
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$110.00
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1 Tagen. | |
| 16102
/ inklusive Röhren
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100 assays
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$130.00
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1 Tagen. | |
| 25102 |
500 assays
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$350.00
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21 Tagen. |
Das Kit enthält ein konzentriertes 200× Assay-Reagenz, Verdünnungspuffer und Proteinstandards von 0, 200 und 400 ng/µL, die für den Messbereich optimiert sind. Das Assay weist eine geringe Variabilität in Abhängigkeit vom Proteintyp auf und ist tolerant gegenüber Verunreinigungen wie Reduktionsmitteln, Nukleotiden und freien Aminosäuren, jedoch nicht gegenüber Detergenzien. Dieses Kit ermöglicht eine genaue Proteinquantifizierung im Bereich von 12,5 µg/mL bis 5 mg/mL für die Ausgangsprobe (Proteinmengenbereich für Messungen mit dem Fluorometer: 0,25–5 µg Protein in 200 µL der Testprobe). Das Experiment wird bei Raumtemperatur durchgeführt, und das Signal ist für 3 Stunden stabil.
Die Qualität der Messungen kann noch höher sein, wenn derselbe Puffer zur Berechnung des Hintergrunds und zur Probenvorbereitung verwendet wird.
Dieses Kit ermöglicht das einfache Verdünnen des Reagenzkonzentrats und das Starten der Messungen. Das Fluorometer ermöglicht das Ablesen von Proben mit einem Volumen von 1–20 µL.
Kunden kauften zusammen mit diesem Produkt
ProteOrange® Reagenz zur Proteinquantifizierung / ProteOrange protein quantification reagent, 500×
ProteOrange® ist ein fluoreszierender, proteinempfindlicher Farbstoff, der zur Quantifizierung gereinigter Proteinproben verwendet wird. Der Farbstoff zeigt minimale Variabilität bei verschiedenen Proteinen. Dieses Reagenz ist ein 500-fach Konzentrat des ProteOrange-Farbstoffs.Allgemeine Eigenschaften
| Lagerungsbedingungen: | Bei 4 °С lagern. Reagenzien vor Gebrauch auf Raumtemperatur temperieren. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. |
| Sicherheitsdatenblatt: | herunterladen |
Kit
| Lagerzeit in Monaten: | 12 |
Referenzen
- Perepletchikova, D.; Kuchur, P.; Basovich, L.; Khvorova, I.; Lobov, A.; Azarkina, K.; Aksenov, N.; Bozhkova, S.; Karelkin, V.; Malashicheva, A. Endothelial-Mesenchymal Crosstalk Drives Osteogenic Differentiation of Human Osteoblasts through Notch Signaling. Cell Communication and Signaling, 2025, 23(1), 100. doi: 10.1186/s12964-025-02096-0
- Shishkova, D.; Lobov, A.; Repkin, E.; Markova, V.; Markova, Y.; Sinitskaya, A.; Sinitsky, M.; Kondratiev, E.; Torgunakova, E.; Kutikhin, A. Calciprotein Particles Induce Cellular Compartment-Specific Proteome Alterations in Human Arterial Endothelial Cells. Journal of Cardiovascular Development and Disease, 2024, 11(1), 5. doi: 10.3390/jcdd11010005
- Sinitsky, M.; Repkin, E.; Sinitskaya, A.; Markova, V.; Shishkova, D.; Barbarash, O. Proteomic Profiling of Endothelial Cells Exposed to Mitomycin C: Key Proteins and Pathways Underlying Genotoxic Stress-Induced Endothelial Dysfunction. International Journal of Molecular Sciences, 2024, 25(7), 4044. doi: 10.3390/ijms25074044
- Grumov, D.; Kostarnoy, A.; Gancheva, P.; Kondratev, A. A Simple and Rapid Microscale Method for Isolating Bacterial Lipopolysaccharides. International Journal of Molecular Sciences, 2024, 25(12), 6345. doi: 10.3390/ijms25126345


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