Sulfo-Cyanin5 NHS-Ester
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Der wasserlösliche Sulfo-Cyanin5-Succinimidylester (SE), ist ein Fluoreszenzfarbstoff für die Markierung verschiedener aminhaltiger Moleküle in wässriger Phase ohne Verwendung eines organischen Hilfslösungsmittels. Dieses Produkt ist daher besonders geeignet für die Markierung von Proteinen, die in Gegenwart organischer Hilfslösungsmittel denaturieren, sowie von Proteinen mit geringer Löslichkeit.
Sulfo-Cyanin5 ist ein Analogon zu Cy5®, dem am häufigsten eingesetzten Fluorophor, und mit vielen Detektionsgeräten wie Platten-Lesegeräten, Mikroskopen und Imagern kompatibel.
Dieser Farbstoff ist stark hydrophil und gut wasserlöslich. Eine nicht sulfonierte Variante ist ebenfalls erhältlich.
Cyanin5 kann als Ersatz für Cy5® und DyLight 649 verwendet werden.
Absorptions- und Emissionsspektren von Sulfo-Cyanin5
Empfohlenes Protokoll
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Gelber Fluorophor mit freier Aminogruppe zur Konjugation mit NHS-Estern, aktivierten Carboxygruppen und EpoxidenBDP TMR-Azid
Borondipyrromethen-Farbstoff mit einer Azidogruppe. Die spektralen Eigenschaften ähneln denen von TAMRA. Aufgrund der langen Fluoreszenzlebensdauer ist BDP-TMR insbesondere für Fluoreszenzpolarisationsmessungen geeignet.Allgemeine Eigenschaften
| Erscheinungsform: | dunkelblaues Pulver |
| Molekülmasse: | 777.95 |
| CAS-Nummer: | 2230212-27-6; 146368-14-1 (N-Ethyl) |
| Molekülformel: | C36H40N3KO10S2 |
| Löslichkeit: | sehr gut löslich in Wasser, gut löslich in DMF und DMSO |
| Qualitätskontrolle: | NMR 1H, HPLC-MS (95%) |
| Lagerungsbedingungen: | Lagerbeständigkeit: 12 Monate ab dem Wareneingang bei −20 °C an einem lichtgeschützten Ort. Transport: bei Raumtemperatur bis zu drei Wochen. Längere Lichteinwirkung vermeiden. Trocken lagern. |
| Sicherheitsdatenblatt: | herunterladen |
| Product specifications |
Spektrale Eigenschaften
| Anregungs-/Absorptionsmaximum / nm: | 646 |
|
ε |
271000 |
| Emissionsmaximum / nm: | 662 |
| Fluoreszenz-Quantenausbeute: | 0.28 |
| CF260: | 0.04 |
| CF280: | 0.04 |
Zitierungen
- Jensen, M.; Stenfelt, L.; Ricci Hagman, J.; Pichler, M.J.; Weikum, J.; Nielsen, T.S.; Hult, A.; Morth, J.P.; Olsson, M.L.; Abou Hachem, M. Akkermansia muciniphila exoglycosidases target extended blood group antigens to generate ABO-universal blood. Nature Microbiology, 2024, 9, 1176–1188. doi: 10.1038/s41564-024-01663-4
- Geng, T.; Paek, S.Y.; Leung, E.; Chamley, L.W.; Wu, Z. Comparing extracellular vesicles from four different cell origins for intracellular drug delivery to pancreatic cancer cells: Small or large vesicles?. Journal of drug delivery science and technology, 2024, 93, 105416. doi: 10.1016/j.jddst.2024.105416
- Stinson, B.M.; Carney, S.M.; Walter, J.C.; Loparo, J.J. Structural role for DNA Ligase IV in promoting the fidelity of non-homologous end joining. Nature Communications, 2024, 15, 1250. doi: 10.1038/s41467-024-45553-z
- Hsia, O.; Hinterndorfer, M.; Cowan, A. D.; Iso, K.; Ishida, T.; Sundaramoorthy, R.; Nakasone, M. A.; Imrichova, H.; Schätz, C.; Rukavina, A.; Husnjak, K.; Wegner, M.; Correa-Sáez, A.; Craigon, C.; Casement, R.; Maniaci, C.; Testa, A.; Kaulich, M.; Dikic, I.; Winter, G. E.; Ciulli, A. Targeted Protein Degradation via Intramolecular Bivalent Glues. Nature, 2024, 627(8002), 204–211. doi: 10.1038/s41586-024-07089-6
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